![\"El](\"https:\/\/lafeber.com\/vet\/wp-content\/uploads\/raptor-types.png\")
<\/a>Figura 1.<\/strong> El grupo conocido como las aves rapaces o aves de presa son un grupo diverso. Cr\u00e9ditos fotogr\u00e1ficos: Dra. Elizabeth Daut (left<\/em>), Beka Weiss via Flickr Creative Commons (FCC) (middle<\/em>) y John Haslam v\u00eda FCC (right<\/em>). Haga clic en la imagen para ampliar.<\/em><\/small><\/p><\/div>\n Todas las aves rapaces consumen una dieta a base de carne que var\u00eda desde la dieta especializada del \u00e1guila pescadora (Pandion haliaetus<\/em>) que se alimenta de peces, a una dieta generalista que puede incluir insectos, mam\u00edferos, aves, reptiles, anfibios e incluso carro\u00f1a. Aparte de las aves de corral, los requerimientos nutricionales exactos de las aves son desconocidos. Sin embargo, la dieta natural de las aves rapaces es siempre relativamente alta en prote\u00ednas y grasas y baja en carbohidratos. Las dietas de presa entera tienen una relaci\u00f3n de calcio\/f\u00f3sforo de 1.5:1, ya que el ave consume tanto los huesos como la carne (Kubiak 2012, Bird, 1976). El tracto gastrointestinal de las aves rapaces difiere sustancialmente del tracto gastrointestinal que se observa en las aves gran\u00edvoras y omn\u00edvoras, como los loros y los pollos. <\/p>\n Figura 2.<\/strong> El material no digerible es compactado en forma de gr\u00e1nulos o egagr\u00f3pilas en el ventr\u00edculo del ave rapaz y es luego regurgitado. Foto proporcionada por la Dra. Elizabeth Daut. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em><\/small><\/p><\/div><\/li>\n<\/ul>\n El \u00edndice de condici\u00f3n corporal<\/a> (ICC) refleja los cambios en la composici\u00f3n corporal y el estado nutricional mucho mejor que el peso corporal por s\u00ed mismo. La puntuaci\u00f3n se basa en la palpaci\u00f3n de la musculatura pectoral, la visualizaci\u00f3n de los dep\u00f3sitos de grasa subcut\u00e1neos y la palpaci\u00f3n de la grasa cel\u00f3mica. La escala de ICC en las aves es clasificada de 1 (emaciaci\u00f3n) a 5 (obesidad). El exceso de energ\u00eda o la obesidad es m\u00e1s frecuente en las aves en cautiverio alojadas en aviarios de reproducci\u00f3n permanentes o en parques zool\u00f3gicos (Forbes 2015, Chitty 2008). A pesar que la musculatura pectoral puede estar atrofiada por falta de uso debido a la temprana edad o a lesiones, el paciente demacrado t\u00edpicamente pierde por lo menos un tercio del peso corporal normal y parece anormalmente delgado (Figura 3). Figura 3.<\/strong> Emaciaci\u00f3n (ICC 1) en un halc\u00f3n de cola roja de un a\u00f1o de edad (Buteo jamaicensis<\/em>). Foto proporcionada por la Dra. Elizabeth Daut. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n Retrase las pruebas diagn\u00f3sticas hasta que el paciente se encuentre lo suficientemente estable como para manejar el estr\u00e9s de la restricci\u00f3n y la venopunci\u00f3n. Las pruebas de laboratorio iniciales a menudo incluyen la hematolog\u00eda, la evaluaci\u00f3n de un frotis de sangre en busca de par\u00e1sitos, la medici\u00f3n de la prote\u00edna total, el hematocrito, la glucosa en sangre e idealmente la creatina quinasa, el lactato deshidrogenasa, el aspartato aminotransferasa y los electrolitos. La anemia e hipoproteinemia son hallazgos comunes en las aves de presa con malnutrici\u00f3n cr\u00f3nica (Figura 4) (Murray 2014, Redig 2009).<\/p>\n Figura 4.<\/strong> B\u00faho nival o del \u00e1rtico (Bubo scandiacus<\/em>) rehabilitado en el Centro de Vida Silvestre de Virginia. Las pruebas diagn\u00f3sticas iniciales revelaron una prote\u00edna total de 0.6 mg\/dL, un hematocrito de 16% y una glucosa de 101 mg\/dL. Foto proporcionada por la Dra. Elizabeth Daut. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div> Realice las pruebas de par\u00e1sitos en heces (citolog\u00eda h\u00fameda fresca\/flotaci\u00f3n), sobre todo en las aves delgadas. Administre un antihelm\u00edntico seg\u00fan sea necesario (Murray 2014). La historia cl\u00ednica y los hallazgos del examen f\u00edsico<\/a> tambi\u00e9n pueden indicar las pruebas diagn\u00f3sticas adicionales que se deben obtener, como las radiograf\u00edas y\/o la endoscopia. El hambre se asocia con una disminuci\u00f3n gradual de la tasa metab\u00f3lica, lo que resulta en hipometabolismo. Durante la inanici\u00f3n, el paciente intenta mantener niveles normales de glucosa en la sangre mediante el aumento de la gluconeog\u00e9nesis y glucogen\u00f3lisis, al tiempo que reduce las reservas de gluc\u00f3geno. Cuando se agotan las reservas de gluc\u00f3geno, el m\u00fasculo y la grasa se descomponen para proveer sustrato para la gluconeog\u00e9nesis. Finalmente, la inanici\u00f3n afecta la masa proteica visceral y la funci\u00f3n de los \u00f3rganos vitales (Parrish 2005).<\/p>\n Las reservas de gluc\u00f3geno se agotan por lo general dentro de las 24 horas de ayuno en el ave gran\u00edvora, sin embargo, proyectos de investigaci\u00f3n han demostrado que las aves rapaces pueden ser relativamente tolerantes a la privaci\u00f3n aguda de alimentos. A pesar de una p\u00e9rdida promedio de masa corporal de 28% y 26% durante los d\u00edas 8 y 13 de ayuno respectivamente, las lechuzas comunes (Tyto alba<\/em>) y los ratoneros comunes (Buteo buteo<\/em>) fueron capaces de volar y comer por s\u00ed mismas cuando el alimento fue introducido de nuevo (Handrich 1993, Garc\u00eda-Rodr\u00edguez 1987). No se observaron cambios significativos en el hematocrito o la prote\u00edna total en los ratoneros en ayunas (Garc\u00eda-Rodr\u00edguez 1987). Por el contrario, los cern\u00edcalos americanos (Falco sparverius<\/em>) que fueron privados de alimentos durante 3 d\u00edas, perdieron 17-20% de masa corporal y tanto el metabolismo como la temperatura corporal disminuyeron. Los investigadores concluyeron que los cern\u00edcalos habr\u00edan muerto si el ayuno se hubiese extendido por 5 d\u00edas (Shapiro 1981).<\/p>\n Durante el estr\u00e9s fisiol\u00f3gico, la fuente de energ\u00eda preferida es la masa corporal magra, lo que resulta en un aumento del catabolismo de prote\u00ednas corporales. Los requerimientos de energ\u00eda se incrementan en un 30-50% para sostener la reparaci\u00f3n de tejidos, los procesos inflamatorios y la funci\u00f3n inmune. La liberaci\u00f3n de catecolaminas, glucag\u00f3n y glucocorticoides aumenta la tasa de gluconeog\u00e9nesis y glucogen\u00f3lisis, aumentando a\u00fan m\u00e1s la tasa metab\u00f3lica (Labato 1992). Muy poco se sabe sobre el estado hipermetab\u00f3lico en las aves en general o en las aves rapaces en particular, pero estos mismos principios se cree que son aplicables.<\/p>\n La atenci\u00f3n de apoyo para el ave rapaz con malnutrici\u00f3n cr\u00f3nica o inanici\u00f3n debe incluir la fluidoterapia, el calor suplementario y medidas para minimizar el estr\u00e9s. Adem\u00e1s de las medidas est\u00e1ndar de reducci\u00f3n del estr\u00e9s, cuando se hospitaliza a estas especies especiales*, las aves rapaces tambi\u00e9n pueden ser calmadas cubriendo ligeramente la cabeza con una toalla o una caperuza de cetrer\u00eda (Figura 5).<\/p>\n Figura 5.<\/strong> Las caperuzas de cetrer\u00eda se utilizan com\u00fanmente para calmar a las aves de presa. Foto proporcionada por Andreas Praefcke v\u00eda Wikimedia Commons. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n * Nota del editor: Vea el art\u00edculo Cuidado y Manejo B\u00e1sico: Hospitalizaci\u00f3n de Mascotas No Tradicionales<\/a> y Sala de Emergencias para Animales Ex\u00f3ticos: Cuidado Cr\u00edtico para el Paciente Aviar<\/a> para obtener informaci\u00f3n adicional.<\/p><\/blockquote>\n La mayor\u00eda de los pacientes que son presentados a los centros de vida silvestre est\u00e1n deshidratados por lo menos un 5% y muchas aves rapaces delgadas o desnutridas tienen hasta un 12% de deshidrataci\u00f3n. Normalice el estado de hidrataci\u00f3n<\/a> gradualmente en un per\u00edodo de 24-48 horas, aunque las p\u00e9rdidas continuas necesitan ser reemplazadas con mayor rapidez. Visite el art\u00edculo Fluidoterapia en el Paciente Aviar para obtener informaci\u00f3n adicional. <\/p>\n Los fluidos subcut\u00e1neos<\/a> son una v\u00eda eficaz de administraci\u00f3n de fluidos para los pacientes con enfermedades leves. Coloque un cat\u00e9ter intravenoso<\/a> o intra\u00f3seo<\/a> en los pacientes m\u00e1s debilitados, pero tenga en cuenta el riesgo de sobrecarga de fluidos en el paciente con hipoproteinemia. Suplemente a los pacientes con tiamina y otras vitaminas B, antes y durante la re-alimentaci\u00f3n inicial (tiamina 1-2 mg\/kg SC cada 24 horas) (Murray 2014). Los fluidos de mantenimiento a menudo se contin\u00faan durante 3-5 d\u00edas despu\u00e9s del inicio de la alimentaci\u00f3n. La transfusi\u00f3n sangu\u00ednea tambi\u00e9n es una opci\u00f3n para el paciente cr\u00edtico con anemia grave e hipoproteinemia.<\/p>\n La hipotermia es muy com\u00fan en las aves rapaces debilitadas y demacradas. Proporcione calor suplementario<\/a> para evitar que el ave gaste energ\u00eda en la termorregulaci\u00f3n. Los fluidos tibios intra\u00f3seos o intravenosos y una unidad de cuidados intensivos con calefacci\u00f3n pueden elevar la temperatura corporal central y perif\u00e9rica. Las indicaciones para el soporte nutricional van desde la p\u00e9rdida de peso profunda y la anorexia hasta una enfermedad o lesi\u00f3n grave (Tabla 1). \u2022\t5-10% de p\u00e9rdida de peso corporal La tasa metab\u00f3lica basal (TMB) representa la cantidad m\u00ednima de energ\u00eda o kilocalor\u00edas (kcal) necesarias para mantener al cuerpo en reposo o la energ\u00eda para mantenerse con vida. Una estimaci\u00f3n de la TMB se basa en la medici\u00f3n por escala del metabolismo, donde TMB = K x (peso en kg elevado a la 0.75). El factor K es una constante te\u00f3rica para las kilocalor\u00edas utilizadas en un per\u00edodo de 24 horas. El valor de K para las aves no paseriformes es de 78 (Murray 2014). Siempre y cuando el paciente posea un tracto gastrointestinal funcional, la nutrici\u00f3n enteral puede iniciarse una vez este se encuentre c\u00e1lido y adecuadamente hidratado (Murray 2014). Los fluidos orales con electrolitos como el Pedialyte (Abbott) son a veces ofrecidos antes de la alimentaci\u00f3n por sonda. Evite ofrecer soluciones ricas en glucosa ya que las dietas normales de las aves rapaces tienen poca glucosa y algunos proyectos de investigaci\u00f3n indican que las soluciones de glucosa pueden acelerar la muerte en las aves rapaces debilitadas (Dobbs 1983). Ver el algoritmo compartido por el Dr. Scott Ford para obtener un resumen \u00fatil sobre el apoyo nutricional para las aves rapaces (Figura 6).<\/p>\n Figura 6.<\/strong> Algoritmo para la resucitaci\u00f3n con fluidos y re-alimentaci\u00f3n de las aves rapaces. Haga clic en la imagen para ampliar. Fuente: Dr. Scott Ford<\/a>. Haga clic aqu\u00ed<\/a> para descargar la versi\u00f3n en PDF (112 KB) <\/small><\/p><\/div>\n *Nota del editor<\/em>: La Uni\u00f3n Europea ha recomendado la prohibici\u00f3n del uso de Hetastarch (almid\u00f3n hidroxietilo o HES) en pacientes humanos y la Administraci\u00f3n de Alimentos y Drogas de los Estados Unidos ha instituido un \u201cs\u00edmbolo de advertencia\u201d. Estos fluidos coloides han sido asociados con lesiones renales agudas y coagulopat\u00edas en algunos pacientes s\u00e9pticos. Un estudio veterinario reciente tambi\u00e9n ha encontrado un aumento en el riesgo de resultados adversos incluyendo la muerte o lesiones renales agudas en perros que recibieron terapia con HES (Hayes 2016). Algunos veterinarios han eliminado por completo el uso de coloides en sus pr\u00e1cticas mientras que otros seleccionan HES de bajo peso molecular, como Voluven\uf0e4 (Hospira) o Vetstarch\uf0e4 (Abbott Labs).<\/p><\/blockquote>\n La f\u00f3rmulas que se utilizan para la alimentaci\u00f3n por sonda en las aves rapaces incluyen la dieta de cuidados intensivos Emeraid Carnivore<\/a> (Emeraid LLC) y las dietas de recuperaci\u00f3n como Carnivore Care (Oxbow), a\/d Canine\/Feline Critical Care (Hill\u2019s) y Maximum-Calorie (Iams). Divida las necesidades cal\u00f3ricas del paciente por el contenido de energ\u00eda de la f\u00f3rmula<\/a> (calor\u00edas por ml) para determinar el volumen total de la f\u00f3rmula que debe ser administrada por d\u00eda. Poco a poco aumente la cantidad total alimentada diariamente durante al menos 2-3 d\u00edas hasta que el paciente sea alimentado con los requerimientos de energ\u00eda de mantenimiento (REM) (Recuadro 1). Los pacientes debilitados son t\u00edpicamente alimentados con peque\u00f1os vol\u00famenes de f\u00f3rmula tres o cuatro veces al d\u00eda (Murray 2014). En las aves de cetrer\u00eda bien entrenadas, que no requieren de restricci\u00f3n, esto se puede lograr con el uso de un tubo de esofagostom\u00eda (Huynhet al<\/em> 2014). TMB = 78 (0.9)0.75 = 72 kcal\/d\u00eda Emeraid Carnivore = 1.67 kcal\/ml Recuadro 2. Volumen del buche La alimentaci\u00f3n por sonda inicial es a menudo el 2.5-3% del peso corporal.<\/p>\n 25 ml\/kg = 22.5 ml Por lo tanto, el volumen de la primera alimentaci\u00f3n debe oscilar entre los 23 a 27 ml.<\/p>\n Figura 7.<\/strong> Alimentando a un halc\u00f3n de cola roja (Buteo jamaicensis<\/em>) con una sonda de goma roja. Foto proporcionada por la Dra. Elizabeth Daut. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n Al ser presentadas, algunas aves rapaces enfermas o heridas pueden alimentarse por s\u00ed mismas, aunque la alimentaci\u00f3n no se debe comenzar hasta que el paciente se encuentre c\u00e1lido y rehidratado. Las aves rapaces adultas son normalmente alimentadas una vez al d\u00eda y las aves alimentadas con presas completas no deben ser re-alimentadas hasta que hayan regurgitado la egagr\u00f3pila (Forbes 2015). Remueva la materia no digerible, como la piel y las plumas, si el ave se encuentra en malas condiciones o si se est\u00e1 administrando un medicamento varias veces al d\u00eda (Forbes 2015).<\/p>\n Se puede realizar una transici\u00f3n de la alimentaci\u00f3n por sonda a los alimentos s\u00f3lidos, una vez que la hidrataci\u00f3n y las anormalidades de los electrolitos se hayan resuelto, el paciente sea capaz de mantener su peso corporal y parezca entusiasmado por la comida. La comida inicial para estos pacientes a menudo consiste en tres o cuatro trozos peque\u00f1os de ratones u otra presa entera, desprovistos de pelo o plumas y remojadas en agua tibia. Si el paciente elimina heces normalmente (ver el seguimiento a continuaci\u00f3n<\/a>) y no se observan complicaciones, entonces la cantidad de comida que se ofrece se puede aumentar gradualmente. Ofrezca varias comidas peque\u00f1as al d\u00eda, para permitir el vac\u00edo del buche entre las comidas. A medida que el ave ha recuperado la condici\u00f3n normal del cuerpo, sigue demostrando un buen apetito y elimina heces normales, se puede introducir gradualmente el material indigerible (Murray 2014). Una vez que el paciente est\u00e1 estable, ofrezca la presa completa incluyendo los \u00f3rganos internos, para asegurarse que la dieta sea nutricionalmente equilibrada (Figura 8) (Murray 2014, Klasing 1998). La presa debe ser del tama\u00f1o adecuado para que el ave la pueda consumir en su totalidad.<\/p>\n Figura 8.<\/strong> Al comienzo las presas enteras se ofrecen “picadas”. Foto proporcionada por la Dra. Elizabeth Daut. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n Si el alimento no es consumido inmediatamente, no permita que permanezca dentro del encierro por largos per\u00edodos de tiempo ya que la proliferaci\u00f3n de bacterias y la contaminaci\u00f3n pueden ocurrir (Chitty 2008). Idealmente el alimento no debe permanecer en el encierro por m\u00e1s de 30-60 minutos (Chitty 2008), especialmente cuando el encierro se encuentra al aire libre durante los meses de calor. Si el ave no comienza a ingerir el alimento, contin\u00fae la alimentaci\u00f3n por sonda y luego ofrezca otra vez alimentos s\u00f3lidos al final del d\u00eda o al d\u00eda siguiente (Figura 9).<\/p>\n Figura 9.<\/strong> Alimentaci\u00f3n asistida de pedazos de presa completa humedecidos a un halc\u00f3n. Foto proporcionada por la Dra. Elizabeth Daut. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n Al alimentar de forma asistida a las aves rapaces j\u00f3venes, ofrezca peque\u00f1os trozos de comida lentamente usando tenazas o pinzas hemost\u00e1ticas. Ligeramente humedezca los alimentos con agua tibia y monitoree cuidadosamente el vaciado del buche. Los buitres j\u00f3venes pueden ser particularmente dif\u00edciles de criar y alimentar debido a su tendencia a regurgitar si est\u00e1n estresados. Chitty (2008) recomienda pre-digerir parcialmente los alimentos, cubri\u00e9ndolos en un suplemento pancre\u00e1tico comercial durante 30 minutos.<\/p>\n Los polluelos j\u00f3venes son incapaces de regurgitar el material no digerible o \u2018egagr\u00f3pila\u2019 y se encuentran bajo riesgo de impactaci\u00f3n proventricular o de muerte (Forbes 2015). No alimente material indigerible a cualquier polluelo de menos de 12 d\u00edas de edad. Algunas especies como el halc\u00f3n esmerej\u00f3n (Falco columbarius<\/em>) no deben ser alimentadas con material indigerible hasta aproximadamente los 20 d\u00edas de edad (Forbes 2015). Mientras que las presas enteras tienen una relaci\u00f3n de calcio\/f\u00f3sforo (Ca:P) equivalente a 1.5:1; la carne sin hueso tiene una relaci\u00f3n Ca:P de 1:20 (Kubiak 2012, Bird 1976). Al igual que todos los animales en crecimiento, los polluelos tienen mayores requerimientos de calcio y vitamina D3 y si son alimentados con una dieta sin huesos o suplementos de vitaminas\/minerales, el polluelo est\u00e1 en riesgo de desarrollar hiperparatiroidismo nutricional secundario (Figura 10 y 11) (Chitty 2008). La desviaci\u00f3n de los huesos largos y m\u00faltiples fracturas plegables son hallazgos comunes en las aves rapaces alimentadas exclusivamente con dietas de carne sin huesos (Kubiak 2012).<\/p>\n Figura 10.<\/strong> Proyecci\u00f3n radiogr\u00e1fica lateral de un polluelo de buitre negro (Coragyps atratus<\/em>) con hiperparatiroidismo nutricional secundario o enfermedad metab\u00f3lica \u00f3sea. Foto proporcionada por el Dr. Dave McRuer, Centro de Vida Silvestre de Virginia. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n Figura 11.<\/strong> Proyecci\u00f3n ventrodorsal de un polluelo de buitre negro (Coragyps atratus<\/em>) con enfermedad metab\u00f3lica \u00f3sea. Foto proporcionada por el Dr. Dave McRuer, Centro de Vida Silvestre de Virginia. Haga clic en la imagen para ampliar<\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n La mejor dieta para las aves rapaces en cautiverio es una que se parece lo m\u00e1s cerca posible a la dieta natural (Murray 2014, Chitty 2008, Cooper 2002). Afortunadamente la mayor\u00eda de las aves rapaces en un centro de rehabilitaci\u00f3n consumen f\u00e1cilmente cualquier fuente de carne apropiada cuando su alimento preferido no est\u00e1 disponible (Murray 2014, Chitty 2008). Sobre todo cuando el alimento se corta y abre o se le quita la piel. Las \u00e1guilas pescadoras son una excepci\u00f3n notable y la alimentaci\u00f3n asistida se requiere a menudo en cautiverio (Murray 2014). Los conejos y roedores son alimentados com\u00fanmente a las aves rapaces en cautiverio que se alimentan de mam\u00edferos. Aunque es relativamente caro, los ratones y ratas de laboratorio son alimentos populares. Las ratas y ratones criados en cautiverio tienden a ser m\u00e1s altos en grasa y bajos en prote\u00ednas que sus contrapartes silvestres (Figura 12) (Murray 2014, Chitty 2008, Crissey 1999, Douglas 1994). Para reducir al m\u00ednimo el riesgo de grasa excesiva en la dieta, ofrezca ratas y ratones sub-adultos que pesen aproximadamente 75% del peso adulto (N. Forbes, comunicaci\u00f3n escrita, Septiembre 2015).<\/p>\n Figura 12.<\/strong> Los ratones son una fuente adecuada de nutrici\u00f3n que com\u00fanmente se usan para alimentar a las aves rapaces en cautiverio. Sin embargo, los ratones de laboratorio tienden a ser relativamente altos en grasa. Foto proporcionada por la Dra. Elizabeth Daut. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n Las aves rapaces en rehabilitaci\u00f3n son normalmente alimentadas con polluelos de un d\u00eda de edad, codornices del g\u00e9nero Coturnix, gallinas y pavos (Forbes 2015, Murray 2014, Chitty 2008). Los polluelos se encuentran disponibles f\u00e1cilmente y son relativamente baratos. Los polluelos de un d\u00eda de edad de buena calidad contienen cantidades adecuadas de prote\u00ednas y buenos niveles de calcio y vitaminas solubles en grasa. Desafortunadamente los polluelos de un d\u00eda de edad y otras dietas derivadas de aves conllevan a un mayor riesgo de transmisi\u00f3n de Salmonella<\/em> spp. y otros agentes infecciosos en comparaci\u00f3n con las dietas a base de mam\u00edferos. El saco vitelino es la principal fuente de calcio y vitaminas liposolubles, por lo tanto, los polluelos de un d\u00eda de edad deben ser alimentados a las aves rapaces con el saco vitelino intacto (Chitty 2008, Bird 1976). Desafortunadamente la yema de huevo es tambi\u00e9n una fuente rica en colesterol y los polluelos con sacos vitelinos intactos no deben ser alimentados m\u00e1s de dos veces por semana a largo plazo (N. Forbes, comunicaci\u00f3n escrita, Septiembre 2015).<\/p>\n Las aves rapaces no se deben alimentar con palomas, ya que varios agentes infecciosos incluyendo las Trichomonas<\/em>* spp., el herpesvirus del halc\u00f3n y la tuberculosis pueden potencialmente ser transmitidos (Forbes 2015, Murray 2014, Redig 2009, Cooper 2002 ).<\/p>\n *Nota del editor<\/em>: Con respecto a la tricomoniasis, algunos veterinarios reportan una exitosa reducci\u00f3n o prevenci\u00f3n de la transmisi\u00f3n, al alimentar con palomas que han sido congeladas y luego descongeladas. En el momento de este anuncio, no hay referencias primarias que realmente demuestren que los protozoos son eliminados despu\u00e9s de la congelaci\u00f3n. Adem\u00e1s, en un estudio T. gallinae<\/em> mostr\u00f3 ser muy resistente a los da\u00f1os causados por la congelaci\u00f3n y fue la \u00fanica tricomona que sobrevivi\u00f3 a la congelaci\u00f3n y descongelaci\u00f3n durante 6 meses, incluso sin la ayuda de glicerol como protector (McEntegart 1954). La trucha silvestre entera y fresca es ideal para las aves rapaces que se alimentan de peces, ya que los peces de cultivo son generalmente mucho m\u00e1s altos en grasa (Chitty 2008). Se debe suplementar el pescado congelado\/descongelado con vitamina B1, ya que la activaci\u00f3n de la tiaminasa destruye la vitamina disponible (Chitty 2008). Suplemente la tiamina a 30 mg\/kg de pescado alimentado por v\u00eda oral cada 24-48 horas (Murray 2014, Joseph 2006, Cooper 2002). Mantenga de manera higi\u00e9nica todas las herramientas y el equipo para el almacenamiento de los alimentos (Chitty 2008). Los utensilios, las tablas de cortar, los envases de alimentos, las tablas y los guantes deben limpiarse y desinfectarse diariamente (Crissey 2001). Las operaciones que alimentan regularmente presas completas, deben mantener refrigeradores y congeladores dedicados al almacenamiento de la carne (Figura 13) (Crissey 2001).<\/p>\n Figura 13.<\/strong> Almacene los alimentos en un congelador de almacenamiento dedicado a la carne. Foto proporcionada por el Centro de Vida Silvestre de Virginia. Haga clic en la imagen para ampliar <\/em>.<\/small><\/p><\/div>\n Parcialmente destripe la presa muerta inmediatamente antes de la congelaci\u00f3n, ya que las bacterias en el tracto gastrointestinal son propensas a contaminar la carne. No remueva el h\u00edgado, el ri\u00f1\u00f3n y el coraz\u00f3n (Chitty 2008). Congele r\u00e1pidamente la presa para evitar el crecimiento excesivo de bacterias (Forbes 2015) en un congelador mantenido entre los -30 a -18 \u00b0<\/strong> C (-22 a 0 \u00b0<\/strong> F ) (Crissey 2001, AZA NAG). Las temperaturas superiores a los -9 \u00b0<\/strong> C (16 \u00b0<\/strong> F) y por debajo del punto de congelaci\u00f3n pueden afectar negativamente la apariencia y el contenido de nutrientes de los alimentos (Crissey 2001). La carne almacenada puede mantenerse durante per\u00edodos prolongados (p. ej. hasta un a\u00f1o) en un congelador, manteniendo la temperatura a los -23 \u00b0<\/strong> C (-10 \u00b0<\/strong> F) o menos. No hay estudios que den recomendaciones del tiempo de almacenamiento de presas enteras (Crissey 2001), sin embargo, el pescado congelado no se debe mantener por m\u00e1s de 4-6 meses (Bernard, 1997).<\/p>\n La congelaci\u00f3n tiende descomponer los tejidos, haciendo que los alimentos sean m\u00e1s susceptibles a la invasi\u00f3n bacteriana despu\u00e9s de la descongelaci\u00f3n (Crissey 2001). La descongelaci\u00f3n incorrecta aumenta el potencial no s\u00f3lo de proliferaci\u00f3n bacteriana, sino tambi\u00e9n la p\u00e9rdida de nutrientes, p\u00e9rdida de palatabilidad y la peroxidaci\u00f3n lip\u00eddica o ranciedad (Crissey 2001). NUNCA descongele la carne a una temperatura ambiente (Crissey 2001, Bernard 1997). Utilice agua para descongelar la carne s\u00f3lo en situaciones de emergencia, ya que este m\u00e9todo aumenta la p\u00e9rdida de nutrientes. El m\u00e9todo m\u00e1s seguro y preferido para descongelar presas es el uso de un refrigerador limpio a 2-3.5 \u00b0<\/strong> C (36-38 \u00b0<\/strong> F) durante 24-48 horas (Forbes 2015, Chitty 2008, Crissey 2001, AZA NAG). La humedad relativa debe mantenerse a 85-90% en espacios refrigerados (Crissey 2001). La carne fresca o descongelada debe utilizarse dentro de 24 horas (Crissey 2001). Nunca se debe descongelar, eviscerar y volver a congelar los alimentos. <\/a><\/p>\n El monitoreo cuidadoso del paciente permite que la cantidad de alimento sea ajustada seg\u00fan sea necesaria (Dierenfeld 2014). Eval\u00fae el peso corporal y el \u00edndice de condici\u00f3n corporal<\/a> cuidadosamente y de forma regular. Tambi\u00e9n eval\u00fae las egagr\u00f3pilas y los excrementos de cerca. Recuerde que una reducci\u00f3n de la masa muscular pectoral puede atribuirse a una menor actividad, incluso con una dieta adecuada.
\n <\/p>\nEspecializaciones gastrointestinales de las aves rapaces<\/h2>\n
\n
<\/a>Evaluaci\u00f3n del estado nutricional<\/h2>\n
\u00cdndice de condici\u00f3n corporal<\/h3>\n
\nLa emaciaci\u00f3n es una presentaci\u00f3n com\u00fan en las aves rapaces que no han aprendido a cazar con \u00e9xito durante su primer a\u00f1o de vida. Las aves tambi\u00e9n pueden ser presentadas en mala condici\u00f3n debido a una variedad de causas tales como la incapacidad para cazar o comer alimentos, las inclemencias del tiempo, lesiones cr\u00f3nicas o cuando quedan atrapadas en un edificio o alguna otra estructura construida por el hombre (Murray 2014, Handrich 1993 Garc\u00eda-Rodr\u00edguez 1987, Shapiro 1981). Los d\u00e9ficits de energ\u00eda tambi\u00e9n pueden ser observados en las aves de cetrer\u00eda como resultado de las pr\u00e1cticas de entrenamiento inadecuadas (Chitty 2008).<\/p>\n<\/a>An\u00e1lisis de sangre<\/h3>\n
<\/a>
\nLos niveles normales de glucosa en la sangre pueden ser muy variables en las aves rapaces. Los niveles suelen superar los 150 mg\/dL (8.33 mmol\/L) en las aves sanas y pueden ser tan altos como los 800 mg\/dL (44.44 mmol\/L) en algunas especies m\u00e1s peque\u00f1as. La actividad convulsiva se puede observar si los niveles de glucosa caen por debajo de los 80 mg\/dL (4.44 mmol\/L). Afortunadamente la glucosa sangu\u00ednea tiende a mantenerse dentro de los l\u00edmites normales por un per\u00edodo relativamente largo en las aves rapaces en ayunas (O\u2019Donnell 1978).<\/p>\nPruebas complementarias<\/h3>\n
\n <\/p>\nNecesidades metab\u00f3licas durante la inanici\u00f3n vs el estr\u00e9s<\/h2>\n
Inanici\u00f3n<\/h3>\n
Hipermetabolismo<\/h3>\n
Cuidados de apoyo<\/h2>\n
<\/a>Fluidos<\/h3>\n
Calor suplementario<\/h3>\n
\n <\/p>\nIndicaciones para el soporte nutricional<\/h2>\n
\nTabla 1. Indicaciones para el soporte nutricional<\/p>\n
\n\u2022\tAnorexia total o parcial por m\u00e1s de 3 d\u00edas
\n\u2022\tTrauma, cirug\u00eda, enfermedad sist\u00e9mica
\n\u2022\tHipoproteinemia<\/p>\nC\u00e1lculo de las necesidades de energ\u00eda<\/h2>\n
\nLos requerimientos de energ\u00eda de mantenimiento<\/a> (REM) son iguales a TMB m\u00e1s la energ\u00eda necesaria para la actividad normal f\u00edsica, la digesti\u00f3n y la termorregulaci\u00f3n. REM se calcula como 1.5 x TMB (Forbes 2015, Murray 2014, Kirkwood 1981). Las aves m\u00e1s grandes consumen m\u00e1s alimentos, pero la ingesta diaria de alimentos es equivalente a un porcentaje significativamente menor de su masa corporal (Forbes 2015).
\n <\/p>\nAlimentaci\u00f3n por sonda<\/h2>\n
<\/a>
\nRecuadro 1. F\u00f3rmulas para la alimentaci\u00f3n por sonda
\nUn halc\u00f3n de cola roja (Buteo jamaicensis) de 900 gramos es presentado con una fractura de h\u00famero derecho. ICC 2\/5.<\/p>\n
\nREM estimado: 1.5 x TMB = 108 kcal\/d\u00eda<\/p>\n
\n108 kcal\/d\u00eda \u00f7 1.67 kcal\/ml = 65 ml al d\u00eda
\nAunque el c\u00e1lculo de las necesidades cal\u00f3ricas es crucial, la alimentaci\u00f3n tambi\u00e9n debe tener en cuenta el volumen estimado del buche y el est\u00f3mago. El volumen alimentado inicial no debe ser m\u00e1s de aproximadamente 1-1.5% del peso corporal, aumentando de 2-3% en la siguiente alimentaci\u00f3n y el volumen alimentado no debe superar el 5% del peso corporal (Huynh et al<\/em> 2014). Cuando se utiliza un tubo de esofagostom\u00eda, un volumen m\u00e1s peque\u00f1o que no exceda el 1.5%, se alimenta con una mayor frecuencia (N. Forbes, comunicaci\u00f3n escrita, Sep 2015). Alimente la f\u00f3rmula a trav\u00e9s de un tubo de goma o de metal (Figura 7) (Recuadro 2).<\/p>\n
\nEl volumen total del buche en un halc\u00f3n de 900 gramos se estima como el 5% del peso corporal en gramos o 50 ml\/kg = 45 ml <\/p>\n
\n30 ml\/kg = 27 ml<\/p>\n<\/a>Alimentaci\u00f3n de presas<\/h2>\n
<\/a><\/a>Alimentaci\u00f3n de las aves en crecimiento<\/h2>\n
<\/a><\/a><\/h2>\n
Opciones de presas completas para la alimentaci\u00f3n de las aves rapaces<\/h2>\n
\nLa composici\u00f3n nutricional de los diferentes tipos de presa es generalmente completa y constante, aunque el contenido de grasa puede variar (Murray 2014, Klasing 1998).<\/p>\nMam\u00edferos<\/h3>\n
<\/a>Aves<\/h3>\n
\nHay un estudio realizado por Bailey et al<\/em>, en el que la congelaci\u00f3n durante 24 horas de cad\u00e1veres de palomas infectadas por T. gallinae<\/em>, inactiv\u00f3 las tricomonas, lo que podr\u00eda<\/strong> reducir el riesgo de transmisi\u00f3n de la enfermedad (Bailey et al<\/em> 2000). Varias fuentes tambi\u00e9n recomiendan que el buche, el es\u00f3fago cervical y la cabeza sean removidas de los cad\u00e1veres de paloma congeladas\/descongeladas antes de la alimentaci\u00f3n para disminuir el riesgo de transmisi\u00f3n, aunque esta pr\u00e1ctica no puede eliminar por completo el riesgo ya que las tricomonas pueden estar presentes en otros tejidos en el estado de enfermedad (Ford 2010, Ford et al<\/em> 2009, Forbes 2008). <\/p><\/blockquote>\nPescado<\/h3>\n
\n <\/p>\nAlmacenamiento y manejo de las presas<\/h2>\n
<\/a>Congelaci\u00f3n de los alimentos<\/h3>\n
Descongelaci\u00f3n de los alimentos<\/h3>\n
\n <\/p>\nMonitoreo del paciente<\/h2>\n
\nLos excrementos de las aves rapaces generalmente consisten en heces color marr\u00f3n oscuro a negro, rodeadas de uratos blancos y una peque\u00f1a cantidad de orina clara. Las heces pueden ser de color marr\u00f3n en las aves alimentadas con polluelos de un d\u00eda de edad (Figura 14) (Redig 2009, Joseph 2006). Las heces pueden ser m\u00e1s aguadas cuando no se alimenta al ave con material no digerible (Cooper 2002).<\/p>\n