Points clés
- Un examen oculaire complet doit être réalisé chez tous les oiseaux de proie présentés pour une prise en charge médicale.
- Dans la mesure du possible, observez dans un premier temps l’oiseau à distance et questionnez de façon exhaustive la personne qui s’en occupe sur sa prise alimentaire et ses habitudes de vol.
- Chez les oiseaux, l’iris contient un certain nombre de fibres musculaires striées. Cette particularité rend l’utilisation de parasympatholytiques (par exemple l’atropine et le tropicamide) inefficace. Heureusement, il est généralement possible de dilater suffisamment les pupilles en assombrissant la pièce.
- Un léger degré d’anisocorie peut être normal chez les rapaces si les yeux ne sont pas éclairés de façon symétrique.
- Un vrai réflexe photomoteur consensuel n’est pas détectable cliniquement.
- Evaluez la fonction visuelle et la capacité de l’oiseau à attraper des proies vivantes avant de le relâcher dans la nature.
Chez de nombreux oiseaux, l’œil est l’organe sensoriel le plus important, et même une altération partielle de la vision peut engendrer de lourdes conséquences. Malheureusement, les lésions oculaires représentent des trouvailles fréquentes lors de l’examen ophtalmique chez les oiseaux de proie . . .
Pour les vétérinaires. Par les vétérinaires.
Le site Lafervet.com est conçu pour une utilisation par les vétérinaires. Il est ouvert aux vétérinaires diplômés, aux techniciens vétérinaires diplômés, aux animaliers et aux étudiants dans ces domaines.
Créer un compte pour accéder à des articles et des ressources du site.
L'inscription est gratuite.
Para Profesionales Veterinarios. Por Profesionales Veterinarios.
El sitio Lafervet.com es para uso de los profesionales veterinarios. Está abierto a los veterinarios licenciados, técnicos veterinarios licenciados, rehabilitadores licenciados y estudiantes en estos campos.
Cree una cuenta para acceder a los artículos y recursos del sitio.
La registro es gratis.
Already a LafeberVet Member?
Please Login
Références
Cousquer G. Ophthalmological findings in free-living tawny owls (Strix aluco) examined at a wildlife veterinary hospital. Vet Rec 156(23): Pp 734-739, 2005.
Holt E, Rosenthal K, Shofer FS.The phenol red thread tear test in large Psittaciformes. Vet Ophthalmol 9(2): 109-113, 2006.
Jeong MB, Kim YG, Yi NY, et al. Comparison of the rebound tonometer (TonoVet) with the applanation tonometer (TonoPen XL) in normal Eurasian Eagle owls (Bubo bubo). Vet Ophthalmol 10(6): 376-379, 2007.
Korbel RT. Avian ophthalmology—A clinically-oriented approach. ProcAnnuConfAssoc Avian Veterinarians 2000.Pp 335-350.
Korbel R, Leitenstorfer P. The modified Schirmer tear test in birds—a method for checking lacrimal gland function. TierarztlPraxAUsg K KlientiereHeimtiere 26(4): 284-294, 1998.
Korbel RT, Redig PT, Walde I, Reese S. Video fluorescein angiography in the eyes of various raptors and mammals. ProcAnnuConf Association of Avian Veterinarians 2000 89-90.
Korbel R, Stutz S. Fundamentals of electroretinography in the common buzzard (Buteobuteo). ProcEurColl Avian Med Surg 2: 211-219, 1997.
Korbel R. Tonometry in avian ophthalmology. J Assoc Avian Vet 7: 44, 1993.
Li T, Howland HC. A true neuronal consensual pupillary reflex in chicks. Vision Research 39(5): 897-900, 1999.
Murphy CJ. Raptor ophthalmology. Compendium Small Animal 9(3): 241-260, 1987.
Pauli A, Klauss G, Diehl, K, Redig, P. Clinical techniques: considerations for release of raptors with ocular disease. J Exot Pet Med 16(2): 101-103, 2007.
Prashar A, Guggenheim JA, Erichsen JT, Hocking PM, et al. Measurement of intraocular pressure (IOP) in chickens using a rebound tonometer: quantitative evaluation of variance due to position inaccuracies. Exp Eye Res 85(4): 563-571, 2007.
Roze M. Comparative electroretinography in several species of raptors. Trans Am Coll Vet Ophthalmol 21: 45-48, 1990.
Willis AM, Wilkie DA. Avian ophthalmology Part 1: Anatomy, examination, and diagnostic techniques. J Avian Med Surg 13(3): 160-166, 1999.