Anesthésie péridurale chez les petits mammifères

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Qu’est-ce qu’une épidurale?

L’épidurales ou bloc neuroaxiale, permet une analgésie préventive en injectant une molécule anesthésique ou analgésique dans l’espace épidurale entourant la moelle épinière (Fig 1).

Figure 1. Les épidurales sont réalisées chez les petits mammifères pour permettre une analgésie préventive. Cliquez sur l’image pour agrandir.

Indications

Les épidurales peuvent être réalisées en vue d’une chirurgie abdominale, d’une chirurgie périnéale, d’une chirurgie orthopédique impliquant le membre pelvien ou le rachis. Certain opioïdes peuvent aussi diffuser cranialement pour permettre une analgésie complémentaire lors de chirurgie thoraciques et de chirurgie touchant le membre thoracique. Les épidurales sont un complément aux analgésique systémiques, et l’analgésie épidurale permet aussi de diminuer les doses d’anesthésiques nécessaires pour réaliser une chirurgie. Les épidurales permettent aussi de diminuer le temps de réveil (Sladky 2000).

Malgré de nombreux bénéfices, les cliniciens hésitent souvent à réaliser des épidurales chez les petits mammifères, cependant cette technique est relativement sécuritaire, facile à réaliser et efficace.

Potentiels effets secondaires

Un des effets secondaires potentiels des épidurales est une parésie ou une paralysie transitoire. D’autres effets secondaires, bien que rares, sont décrits lors d’épidurales utilisant des opioïdes: prurit, vomissement ou nausée, dépression respiratoire, rétention urinaire.

Contraindications

Les injections épidurales sont contrindiquées chez les patients souffrant de coagulopathie, de sepsis, d’infection dermatologique, d’hypovolémie, ou lors de fracture pelvienne ou sacré déformant les repères anatomiques.

Equipement nécessaire

Pour réaliser une épidurale, sont nécessaires:

• Compresses tièdes imbibées de solution désinfectante
• Aiguilles de tailles appropriée (Boite 1)

  Boite 1. Tailles d’aiguilles recommandées pour des injections épidurales chez les petits mammifères
  Espèces	Tailles des aiguilles
  Furet ou lapin	22-gauge 1.5-in aiguille spinale 24-gauge aiguille spinale 25-gauge (orange) aiguille hypodermique
  Chinchilla ou cobaye	25-gauge (orange) aiguille hypodermique 24-gauge aiguille spinale

  L’utilisation d’aiguille spinale permet de prévenir la création d’une inflammation au niveau de la peau qui pourrait bloquer l’écoulement du fluide cérébrospianal ou créer un foyer d’infection.
• Un assistant pour maintenir l’aiguille stabilisée lors du changement de seringue
• NaCl
• Produit à injecter en épidural:  Sélectionner un agent qui fournit une anesthésie, une analgésie ou les deux. La molécule sélectionnée doit-être exempte de tout conservateur afin d’éviter toute réponse neurotoxique ou allergique.
  La morphine est l’opioïde le plus utilisé à cause de sa puissance analgésique et de sa durée d’action (boite 2). D’autre opioïdes peuvent aussi être utilisés comme la buprénorphine, l’oxymorphone, et l’hydromorphone.
  

  Boite 2. Dose de morphine utilisée en épidurale chez les petits mammifères.
  Espèces	Doses de morphine en épidurale (mg/kg)
  Furet	0.1
  Lapin	0.22

  Les anesthésiques locaux peuvent être administrés en épidural seul ou avec un opioïde. La bupivacaïne (0.1mg/kg chez le lapin) est une molécule de choix car il apparait qu’elle ait moins d’effets de blocage moteur tout en ayant un bon blocage sensitif. Les petits mammifères, en particulier les lapins, peuvent devenir très stressés au cours du réveil s’ils sont incapables de bouger leurs pattes arrière.
  Les effets des blocs épiduraux progressent caudaux-crânialement. Le volume utilisé influence la migration crâniale de la molécule.
  Le volume total de molécule utilisée ne doit jamais dépasser les 0.33ml/kg.

Réaliser une injection épidurale

1. Pour réaliser une injection épidurale, le patient doit être complétement anesthésié.
2. Placer le patient en décubitus sternal avec les hanches fléchis cranialement afin de complétement ouvrir l’espace lombo sacré (Fig 2-3).
   

   Figure 2. Maintenir le lapin en décubitus sternal avec les pattes arrière tirées cranialement. Cliquez sur l’image pour agrandir

   

   Figure 3. Positionner le patient en décubitus sternal. A note que chez le furet, les pattes sont tirées en arrière. Cliquez sur l’image pour agrandir

3. Identifier les bords crâniaux des ailes de l’ilium. (Fig 4).
   

   Figure 4. Identifier les bords crâniaux des ailes de l’ilium. Cliquez sur l’image pour agrandir

4. Visualiser la ligne virtuelle transverse qui connecte ces deux points. La jonction lombosacrée se trouve au milieu de cette ligne virtuelle. (Fig 5).
   

   Figure 5. Visualiser la ligne virtuelle connectant les deux ailes de l’ilium. Cliquez sur l’image pour agrandir.

5. Palper le processus épineux de l’espace lombo sacré (Fig 6).
   

   Figure 6. Palper le processus épineux de et l’espace lombo sacré.Cliquez sur l’image pour agrandir.

6. Raser les poils autour de l’espace lombo sacré. Cet espace doit être assez large pour pouvoir voir les points de repère osseux et maintenir une stérilité lors de la procédure (Fig 7).
   

   Figure 7. Raser les poils de façon à former un carré ou un rectangle en regard de l’espace lombo sacré. Cliquez sur l’image pour agrandir.

7. Préparer de manière aseptique la peau.
8. Tenir l’aiguille perpendiculaire avec le biseau positionner cranialement. Insérer l’aiguille précisément sur la ligne médiale, caudalement à la dernière vertèbre. L’aiguille doit passer sans rencontrer de résistance dans l’espace lombo sacré jusqu’à toucher l’os ou le plancher de l’espace lombo-sacré (Fig 8). La sensation particulière de passage à travers l’espace lombo sacré que l’on ressent chez le chien, n’est généralement pas ressentie chez les furets, en particulier si une aiguille hypodermique est utilisée. Cependant, la queue des furets souvent bouge lorsque l’aiguille touche le tissu nerveux.
   

   Figure 8. Insérer l’aiguille exactement sur la ligne médiane caudalement à la dernière la dernière vertèbre lombaire.Cliquez sur l’image pour agrandir.

9. Pour confirmer le placement correct de l’aiguille :
   Monter une seringue vide de 1ml et injecter doucement 0.1ml d’air
   Ou Injecter 0.2ml de NaCl stérile combiné avec 0.2ml d’air. Il doit y avoir une absence de résistance au moment de ces injections si l’aiguille est bien dans l’espace épidural. De plus, lorsque l’on aspire ni sang ni liquide cérébrospinal ne doivent remplir l’espace mort de l’aiguille. S’il y a une résistance à l’injection de l’air ou si la peau gonfle, avancer l’aiguille jusqu’à ce qu’il passe complétement le ligamentum flavum, et vérifier la résistance une nouvelle fois.
10. Une fois que l’aiguille est bien en position, remplacer la seringue vide par celle contenant l’agent anesthésique. Doucement injecter la molécule dans l’espace épidural. Attention: Une injection rapide peut entrainer une distribution inégale de la molécule dans l’espace épidurale et même entrainer une augmentation de la pression intracrânienne.
11. Bien veiller à vider la vessie du patient avant que celui-ci ne se réveille de son anesthésie. Le tonus vésical et sphinctérien devrait être de retour avant que la vessie ne soit de nouveau remplie.

L’injection épidurale fait-elle effet?

Une épidurale réussie entraine une perte de tonus sphinctérien, une perte du tonus de la queue, ainsi qu’une chute de la pression artériel. Cela peut mettre jusqu’à 15-30 minutes pour que les effets analgésiques ne soient atteints. Les effets peuvent durer de 8 à 24 heures.

Script vidéo écrit par Christal Pollock, DVM, Dipl. ABVP-Avian; vétérinaire consultant Lafeber et rellus par M. Scott Echols, DVM, Dipl. ABVP-Avian ainsi que Marla Lichtenberger, DVM, Dipl. ACVECC.Epidural Anesthesia in Small Mammals

Référence