Electrocardiographie chez les Animaux d’Espèces Exotiques

Points clés

  • L’électrocardiographie permet de surveiller l’activité électrique des cellules musculaires cardiaques et est particulièrement utile au cours des anesthésie de longue durée lorsque des perturbations de la balance électrolytique et acido-basique peuvent conduire à des arythmies.
  • Chez les petits patients ou les espèces avec une peau délicate les pinces alligators ne sont généralement pas attachées directement. A la place, les pinces sont fixées à l’extrémité d’aiguilles hypodermiques de petit diamètre ou sur des sutures en acier inoxydable qui ont été passées au travers de la peau et de l’espace sous-cutané.
  • Des patchs adhésifs ou des électrodes à bouton pour électrocardiogramme peuvent être placés sur les coussinets des petits mammifères ou directement sur la peau des grands mammifères ou des grands reptiles lisses.
  • Le tracé normal d’un ECG chez un oiseau peut ressembler à une tachycardie ventriculaire, principalement car l’onde S est grande et négative.
  • Le tracé normal d’un ECG de reptile peut présenter une onde SV, qui correspond à la dépolarisation du sinus venosus, des ondes de faible amplitude, et des intervalles ST et QT plus longs.
  • Prenez toujours garde, lors de l’utilisation de l’ECG pour vérifier si le patient reptilien est en vie, car le cœur peut continuer à se contracter pendant de grandes périodes de temps suite à la mort. Utilisez toujours une technique de surveillance additionnelle pour confirmer la circulation comme la capnographie ou l’existence d’un flux sanguin avec un Doppler.
  • Cet article fait partie d’une série sur la surveillance anesthésique chez les animaux d’espèces exotiques. Les sujets additionnels disponibles incluent: la pression sanguine, la capnométrie, l’oxymétrie de pouls, et la surveillance des signes vitaux .

L’activité électrique des cellules musculaires cardiaques peut être surveillée par le tracé d’un électrocardiogramme (ECG). Le tracé ECG est composé de trois complexes primaires: l’onde P, le complexe QRS, et l’onde T, qui représentent respectivement la dépolarisation atriale, la dépolarisation ventriculaire et la repolarisation ventriculaire . . .


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Références


1. Bertelsen MF. Squamates (snakes and lizards). In: West G, Heard D, Caulkett N (eds). Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia, 2nd ed. Ames, IA: Wiley Blackwell; 2014:657-659.

2. Cinar A, Bagci C, Belge F, Uzun M. The electrocardiogram of the Pekin duck. Avian Dis 40(4):919-923, 1996.

3. DeVoe RS. Reptilian cardiovascular anatomy and physiology. Proc Annu Conf Am Board Vet Pract 2011.

4. Espino L, Saurez ML, Lopez-Beceiro A, Santamarina G. Electrocardiogram reference values for the buzzard in Spain. J Wildl Dis 37(4):680-685, 2001.

5. Flecknell PA, Thomas AA. Comparative anesthesia and analgesia of laboratory animals. In: Grimm KA, Lamont LA, Tranquilli WJ et al (eds). Veterinary Anesthesia and Analgesia: The Fifth Edition of Lumb and Jones. Ames, Iowa: Wiley Blackwell; 2015: 758.

6. Hawkins MG, Zehnder AM, Pascoe PJ. Cagebirds. In: West G, Heard D, Caulkett N (eds). Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia, 2nd ed. Ames, IA: Wiley Blackwell; 2015:770-772.

7. Heard D. Anesthesia. In: Speer BL (ed). Current Therapy in Avian Medicine and Surgery. St. Louis: Elsevier; 2016: 611-615.

8. Heard D. Lagomorphs (Rabbits, hares, and pikas). In: West G, Heard D, Caulkett N (eds). Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia, 2nd ed. Ames, IA: Wiley Blackwell; 2015:1558-1559.

9. Heard D. Rodents. In: West G, Heard D, Caulkett N (eds). Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia, 2nd ed. Ames, IA: Wiley Blackwell; 2015:1576-1579.

10. Holz RM, Holz P. Electrocardiography in anaesthetised red-eared sliders (Trachemys scripta elegans). Res Vet Sci 58(1):67-69, 1995.

11. Huston SM, Lee P, Quesenberry KE, et al. Cardiovascular disease, lymphoproliferative disorders, and thymoma. In: Quesenberry KE, Carpenter JW (eds.) Ferrets, Rabbits, and Rodents: Clinical Medicine and Surgery, 3rd ed. St. Louis: Elsevier Saunders; 2012: 257-268.

12. Kik MJL, Mitchell MA. Reptile cardiology: A review of anatomy and physiology, diagnostic approaches, and clinical disease. Semin Avian Exot Pet Med 14(1):52-60, 2005.

13. Ludders JW. Comparative anesthesia and analgesia of birds. In: Grimm KA, Lamont LA, Tranquilli WJ et al (eds). Veterinary Anesthesia and Analgesia: The Fifth Edition of Lumb and Jones. Ames, Iowa: Wiley Blackwell; 2015: 808, 812.

14. Morrisey JK, Kraus MS. Cardiovascular and other diseases. In: Quesenberry KE, Carpenter JW (eds.) Ferrets, Rabbits, and Rodents: Clinical Medicine and Surgery, 3rd ed. St. Louis: Elsevier Saunders; 2012: 62-77.

15. Ozeki L, Caulkett N. Monitoring. In: West G, Heard D, Caulkett N (eds). Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia, 2nd ed. Ames, IA: Wiley Blackwell; 2015: 149-165.

16. Pees M, Krautwald-Junghanns, ME. Avian echocardiography. Seminars in Avian and Exotic Pet Medicine, 2005, Vol.14(1), pp.14-21.

17. Vigani A. Chelonians (Tortoises, turtles, and terrapins). In: West G, Heard D, Caulkett N (eds). Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia, 2nd ed. Ames, IA: Wiley Blackwell; 2015: 681-702.

18. Zehnder AM, Hawkins MG, Pascoe PJ. Avian anatomy and physiology. In: West G, Heard D, Caulkett N (eds). Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia, 2nd ed. Ames, IA: Wiley Blackwell; 2015:723-739.

LECTURES COMPLEMENTAIRES

Casares M, Enders F, Montaya JA. Comparative electrocardiography in four species of macaws (genera Anodorhynchus and Ara). J Vet Med A Physiol Pathol Clin Med 47(5):277-281, 2000.

Hassanpour H, Hojjati P, Zarei H. Electrocardiogram analysis of the normal unanesthetized green peafowl (Pavo muticus). Zoo Biol 30(50):542-549, 2011.

Hassanpour H, Zarei H, Hojjati P. Analysis of electrocardiographic parameters in helmeted guinea fowl (Numida meleagris). J Avian Med Surg 25(1):8-13, 2011.

Heard D. Galliformes and columbiformes. In: West G, Heard D, Caulkett N (eds). Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia, 2nd ed. Ames, IA: Wiley Blackwell; 2015:871.

Keene BW, Flammer K. ECG of the month. J Am Vet Med Assoc 198(3):408-409, 1991.

Longley L. Anaesthesia of Exotic Pets. London: Elsevier; 2008.

Lumeij JT, Stokhof AA. Electrocardiogram of the racing pigeon (Columba livia domestica). Res Vet Sci 38(3):275-278, 1985.

Musulin SE, Adin DB. ECG of the month. Sinus arrhythmia in an African grey parrot. J Am Vet Med Assoc 229(4):505-507, 2006.

Nap AM, Lumeij JT, Stokhof AA. Electrocardiogram of the African grey (Psittacus erithacus) and Amazon (Amazona spp.) parrot. Avian Pathol 21(1):45-53, 1992.

Nevarez JG. Monitoring during avian and exotic pet anesthesia, Semin Avian Exot Pet Med 14(4):277-283, 2005.

Tag TL, Day TK. Electrocardiographic assessment of hyperkalemia in dogs and cats. J Vet Emerg Crit Care 18(1):61-67, 2008.

Zandvliet M. Electrocardiography in psittacine birds and ferrets. Sem Avian Exotic Pet Med 14(1):34-51, 2005.